BLOK LICENCJACKI

Prace licencjackie na kierunku Biologia, mogą być realizowane:

  • dla bloku licencjackiego Genetyka w:
    • Katedrze Biotechnologii Molekularnej i Genetyki
  • dla bloku licencjackiego Biologia eksperymentalna w:
    • Katedrze Cytofizjologii
    • Katedrze Ekofizjologii Roślin
    • Katedrze Fizjologii i Biochemii  Roślin
    • Katedrze Neurobiologii

Prace licencjackie na kierunku Biotechnologia dla bloku licencjackiego Biotechnologia mogą być realizowane w następujących jednostkach:

  • Katedra Biotechnologii Molekularnej i Genetyki
  • Katedra Ekofizjologii Roślin 
  • Katedra Fizjologii i Biochemii Roślin

SPECJALNOŚĆ MAGISTERSKA

Prace magisterskie na kierunku Biologia, mogą być realizowane:

  • dla specjalności magisterskiej Genetyka w:
    • Katedrze Biotechnologii Molekularnej i Genetyki
  • dla specjalności magisterskiej Biologia eksperymentalna w:
    • Katedrze Biotechnologii Molekularnej i Genetyki
    • Katedrze Cytofizjologii
    • Katedrze Ekofizjologii Roślin
    • Katedrze Fizjologii i Biochemii  Roślin
    • Katedrze Neurobiologii

Prace magisterskie na kierunku Biotechnologia dla specjalności Biotechnologia molekularna mogą być realizowane w następujących jednostkach:

  • Katedra Biotechnologii Molekularnej i Genetyki
  • Katedra Ekofizjologii Roślin 
  • Katedra Fizjologii i Biochemii Roślin

Biotechnologia molekularna kształtuje wiedzę z zakresu biotechnologii, technik inżynierii genetycznej i biologii molekularnej znajdujących zastosowanie w ochronie zdrowia, laboratoriach naukowo-badawczych, przemyśle i ochronie środowiska.

Prace magisterskie na kierunku Biologia, studia niestacjonarne, mogą być realizowane w następujących jednostkach Instytutu:

  • Katedrze Biotechnologii Molekularnej i Genetyki
  • Katedrze Cytofizjologii
  • Katedrze Ekofizjologii Roślin
  • Katedrze Fizjologii i Biochemii  Roślin
  • Katedrze Neurobiologii

TEMATYKA BADAŃ I METODY BADAWCZE W POSZCZEGÓLNYCH JEDNOSTKACH INSTYTUTU

KATEDRA BIOTECHNOLOGII MOLEKULARNEJ I GENETYKI

Tematyka badawcza:

  • badania biofarmaceutyków
  • badania cytotoksyczności związków pochodzenia naturalnego oraz syntetyzowanych de novo o charakterze przeciwnowotworowym
  • ocena genotoksyczności związków o potencjalnej aktywności przeciwnowotworowej
  • analiza stopnia proliferacji komórek oraz przebiegu cyklu komórkowego
  • ocena stopnia indukcji apoptozy i nekrozy w komórkach człowieka (model in vitro)
  • analiza poziomu stresu oksydacyjnego
  • badanie procesu starzenia komórkowego w komórkach nowotworowych i prawidłowych (in vitro)
  • badania z użyciem technik inżynierii genetycznej
  • produkcja rekombinowanych białek o właściwościach przeciwbakteryjnych i przeciwnowotworowych w różnych systemach ekspresyjnych
  • detekcja białek (Western Blot)

Metody badawcze:

  • PCR, RT-PCR
  • klonowanie molekularne
  • elektroforeza kwasów nukleinowych i białek
  • Western Blot, Southern Blot
  • testy immunocytochemiczne
  • mikroskopia świetlna i fluorescencyjna
  • rekombinacja i transformacja DNA
  • hodowle komórkowe linii nowotworowych i prawidłowych człowieka 
  • testy cytotoksyczności, w tym: MTT, LDH
  • testy genotoksyczności, w tym test kometowy w wersji neutralnej i alkalicznej, test relaksacji plazmidowego DNA
  • testy aktywności kaspaz 8/9/3/7
  • cytometria przepływowa
  • metody bioinformatyczne w badaniach in silico

Tematyka badawcza:

  • badania biofarmaceutyków
  • badania cytotoksyczności związków pochodzenia naturalnego oraz syntetyzowanych de novo o charakterze przeciwnowotworowym
  • ocena genotoksyczności związków o potencjalnej aktywności przeciwnowotworowej
  • analiza stopnia proliferacji komórek oraz przebiegu cyklu komórkowego
  • ocena stopnia indukcji apoptozy i nekrozy w komórkach człowieka (model in vitro)
  • analiza poziomu stresu oksydacyjnego
  • badanie procesu starzenia komórkowego w komórkach nowotworowych i prawidłowych (in vitro)
  • detekcja białek (Western Blot)
  • biotechnologia molekularna
  • badania biofarmaceutyków
  • inżynieria genetyczna
  • produkcja rekombinowanych białek o właściwościach przeciwbakteryjnych i przeciwnowotworowych w różnych systemach ekspresyjnych
  • inżynieria metaboliczna komórek
  • konstrukcja alternatywnych wektorów do transformacji
  • transformacja genetyczna

Metody badawcze:

  • PCR, RT-PCR, qPCR
  • elektroforeza kwasów nukleinowych i białek
  • testy immunocytochemiczne
  • mikroskopia świetlna i fluorescencyjna
  • hodowle komórkowe linii nowotworowych i prawidłowych człowieka
  • testy cytotoksyczności, w tym: MTT, fiolet krystaliczny, czerwień obojętna
  • testy genotoksyczności, w tym test kometowy w wersji neutralnej i alkalicznej, test relaksacji plazmidowego DNA
  • markery apoptozy
  • testy aktywności kaspaz 8/9/3/7
  • cytometria przepływowa
  • markery stresu oksydacyjnego
  • metody bioinformatyczne w badaniach in silico
  • klonowanie molekularne
  • mikrorozmnażanie w warunkach in vitro
  • techniki prowadzenia hodowli komórkowych i kultur in vitro
  • transformacja genetyczna
  • izolacja genomowego DNA (metoda CTAB, SDS)
  • izolacja plazmidowego DNA z bakterii
  • Western blot, Southern blot

Tematyka badawcza:

  • biotechnologia molekularna,
  • badania biofarmaceutyków
  • inżynieria genetyczna
  • produkcja rekombinowanych białek o właściwościach przeciwbakteryjnych i przeciwnowotworowych w różnych systemach ekspresyjnych
  • inżynieria metaboliczna komórek
  • konstrukcja alternatywnych wektorów do transformacji
  • transformacja genetyczna

Metody badawcze:

  • PCR, qPCR
  • elektroforeza w żelu agarozowym i poliakrylamidowym
  • klonowanie molekularne
  • mikrorozmnażanie w warunkach in vitro
  • techniki prowadzenia hodowli komórkowych i kultur in vitro
  • transformacja genetyczna
  • izolacja genomowego DNA (metoda CTAB, SDS)
  • izolacja plazmidowego DNA z bakterii
  • elektroforeza kwasów nukleinowych i białek
  • Western blot, Southern blot
  • testy histochemiczne
  • mikroskopia świetlna i fluorescencyjna

KATEDRA CYTOFIZJOLOGII

Tematyka badawcza:

  • reakcje ciał Cajala na czynniki stresowe
  • struktura, funkcja i aktywność transkrypcyjna jąderek. Reakcje jąderek na czynniki stresowe
  • biosynteza, struktura i funkcja kutikuli roślinnej i zwierzęcej. Roślinne struktury lipidowe
  • regulacja embriogenezy roślin, ze szczególnym uwzględnieniem roli kinaz MAPK
  • wpływ herbicydów na rozwój roślin. Komórkowe aspekty zabiegów agrotechnicznych
  • naturalne związki chemiczne jako alternatywne środki ochrony roślin
  • mechanizmy regulacyjne cyklu komórkowego u roślin
  • przedwczesna kondensacja chromosomów. Niestabilność chromosomowa i genomowa
  • uszkodzenia DNA i naprawa DNA. Stres replikacyjny. Timing replikacyjny
  • zależności oksydacyjno-replikacyjne u roślin w warunkach stresu

Metody badawcze:

  • klasyczna mikroskopia świetlna i fluorescencyjna
  • mikroskopia elektronowa
  • agarozowa i poliakrylamidowa elektroforeza żelowa
  • cytochemia, immunocytochemia i metody „immunoblot”
  • spektrofotometria i mikrocytofotometria
  • chromatografia cienkowarstwowa i jonowymienna oraz sączenie molekularne
  • analizy ilościowe metabolitów komórkowych, w tym kwasów nukleinowych, cukrów, białek, hormonów roślinnych oraz pomiary aktywności enzymatycznej

KATEDRA EKOFIZJOLOGII ROŚLIN

Tematyka badawcza:

  • fizjologiczne, biochemiczne i molekularne mechanizmy odporności roślin na abiotyczne stresy środowiskowe – indukcja strategii obronnych roślin
  • Arabidopsis thaliana jako gatunek modelowy w badaniach fizjologii stresu, z wykorzystaniem zmienności naturalnej (ekotypy) i indukowanej (mutanty), w hodowlach in vivo i in vitro
  • mechanizmy i regulacja procesu śmierci komórek roślinnych w zawiesinowych kulturach in vitro tytoniu Nicotiana tabacum BY-2
  • badanie własności fitozwiązków w kontekście pozyskiwania nowych źródeł żywności funkcjonalnej, nutraceutyków i kosmeceutyków
  • nowe naturalne biostymulatory roślin
  • optymalizacja ekouprawy biomasy roślin energetycznych
  • fitoremediacja - rośliny w odnowie środowiska i renaturyzacji wód

Metody badawcze:

  • sterylne hodowle roślin in vitro
  • testy biochemiczne (w tym, aktywność proteolityczna, enzymy AOX, testy ABTS+, FRAP, DPPH, βCBT, FeMICA) i markery stresu (m.in. TBARS, prolina, polifenole, OxiProt, H2O2, O2*-, dysfunkcje błon)
  • techniki molekularne: elektroforezy 1- i 2-D, zymogramy, immunodetekcja, Western Blot
  • barwienia histochemiczne
  • mikroskopia świetlna i konfokalna
  • eksperymenty z wykorzystaniem roślinnych gatunków modelowych (Arabidopsis thaliana, Nicotiana tabacum, etc.), wykorzystanie mutantów (w tym mutantów T-DNA i narzędzi genetyki wstecznej) do analizy funkcjonalnej genów, badanie ekspresji i lokalizacji wybranych białek, klonowanie genów/przygotowanie konstruktów genowych, transformacje poprzez Agrobacterium, testy komplementacji funkcjonalnej

Tematyka badawcza:

  • Fizjologiczne, biochemiczne i molekularne mechanizmy odporności roślin na abiotyczne stresy środowiskowe. Indukcja strategii obronnych roślin
  • Arabidopsis thaliana jako gatunek modelowy w badaniach fizjologii stresu, z wykorzystaniem zmienności naturalnej  i indukowanej w hodowlach in vivo i in vitro
  • Wpływ czynników abiotycznych na wzrost i rozwój roślin – w tym także regulacja procesu programowanej śmierci komórek roślinnych w zawiesinowych kulturach in vitro tytoniu Nicotiana tabacum BY-2
  • Poprawa jakości materiałów siewnych przez dobór i wykonanie różnych zabiegów priming’u tj. kondycjonowania nasion
  • Naturalne biostymulatory roślin – poszukiwania i zastosowanie
  • Rola melatoniny w roślinach (fitomelatonina)
  • Badanie właściwości przeciwutleniających fitozwiązków w kontekście pozyskiwania nowych źródeł żywności funkcjonalnej i naturalnych kosmeceutyków
  • Optymalizacja uprawy biomasy roślin energetycznych. Ekouprawy z wykorzystaniem metabolitów glonów i sinic
  • Fitoremediacja – rośliny w odnowie środowiska i renaturyzacji wód

Metody badawcze:

  • Hodowle tradycyjne (w glebie), hydroponiczne i in vitro
  • Biotesty, testy fizjologiczne
  • Pomiar aktywności fotosyntetycznej i fluorescencji chlorofilu
  • Analizy biochemiczne, testy enzymatyczne
  • Proteomika - rozdziały elektroforetyczne jedno i dwuwymiarowe
  • Techniki biologii molekularnej – pracownia GMO

Tematyka badawcza:

  • Mechanizmy strategii obronnych roślin wobec stresów abiotycznych
  • Poszukiwanie naturalnych biostymulatorów roślin i nowatorskich metod wprowadzania ich do roślin
  • Dobór i aplikacja priming’u w celu poprawy jakości nasion
  • Ekouprawy biomasy roślin energetycznych
  • Fitozwiązki w żywności funkcjonalnej i kosmeceutykach
  • Badania i testy na gatunkach modelowych, a także makrofitach wodnych i roślinach uprawnych w warunkach in vivo i in vitro

Metody badawcze:

  • Komórkowe kultury zawiesinowe in vitro
  • Testy biochemiczne
  • Techniki molekularne: elektroforezy 1- i 2-D, zymogramy, immunodetekcja, Western blot
  • Barwienia histochemiczne, mikroskopia świetlna i konfokalna
  • Izolacja genomowego i plazmidowego DNA
  • PCR
  • Izolacja i oczyszczanie białek
  • Elektroforeza w żelu agarozowym
  • Analizy spektrofotometryczne
  • Analiza funkcjonalna genów (wykorzystanie mutantów T-DNA i narzędzi genetyki wstecznej)

KATEDRA FIZJOLOGII I BIOCHEMII ROŚLIN

Tematyka badawcza:

  • roślinne kultury in vitro. Rozmnażanie roślin ozdobnych, użytkowych, leczniczych, ginących techniką kultur  in vitro
  • produkcja metabolitów wtórnych o właściwościach leczniczych i prozdrowotnych, barwników spożywczych i kosmetycznych, ekologicznych środków ochrony roślin i antyoksydantów w roślinnych kulturach in vitro
  • biochemiczne mechanizmy odporności roślin na patogeny i szkodniki. Odporność roślin na stresy środowiskowe: zasolenie, kwaśny deszcz, metale śladowe
  • fizjologia roślin, współdziałanie szlaków metabolicznych w warunkach prawidłowych i patologicznych/stresowych, wpływ efektywności fotosyntezy na metabolizm rośliny
  • fitoremediacja; wykorzystanie roślin w oczyszczaniu gleb, wód gruntowych i powietrza ze związków toksycznych pochodzenia antropomorficznego

Metody badawcze:

  • hodowla roślin w glebie, hydroponiczna, in vitro
  • izolacja organelli komórkowych
  • spektrofotometryczne i fluorymetryczne oznaczanie aktywności enzymów i stężenia związków
  • immunochemiczne oznaczanie zawartości hormonów roślinnych
  • histochemiczne oznaczanie reaktywnych form tlenu
  • identyfikacja i oznaczanie zawartości metabolitów za pomocą wysokosprawnej chromatografii cieczowej (HPLC) i spektrometrii mas (MS)
  • biotesty aktywności przeciwdrobnoustrojowej metabolitów wtórnych
  • mikroskopia fluorescencyjna i  konfokalna
  • elektroforeza białek w żelu poliakrylamidowym w warunkach natywnych i denaturujących

Tematyka badawcza:

  • Reakcje roślin na stres środowiskowy i proekologiczne metody ochrony roślin
  • Analiza fitotoksyczności prób środowiskowych skażonych trwałymi zanieczyszczeniami organicznymi i metalami ciężkimi
  • Fitoremediacja - innowacyjne rozwiązania w zakresie zastosowania roślin do usuwania zanieczyszczeń z matryc środowiskowych
  • Roślinne kultury in vitro – ratunek dla gatunków zagrożonych i źródło związków bioaktwnych
  • Wykorzystanie korzeni transformowanych w systemach biosyntez fitofarmaceutyków i bioaktywatorów odporności roślin oraz biotransformacji związków egzogennych

Metody badawcze:

  • Hodowla komórek i tkanek roślinnych in vitro
  • HPLC, HPLC-ESI-MS
  • Metody histochemiczne
  • Elektroforeza
  • Mikroskopia świetlna i konfokalna
  • Biotesty

KATEDRA NEUROBIOLOGII

Tematyka badawcza:

  • badania elektrofizjologiczne w zakresie zjawisk oscylacyjnych i aktywności pojedynczych neuronów wybranych struktur ośrodkowego układu nerwowego
  • badania mechanizmów synchronizacji sieci nerwowych, w kontekście rytmu theta generowanego w obszarze hipokampa oraz tylnego podwzgórza
  • behawioralne i elektrofizjologiczne badania zjawisk leżących u podstaw zachowań stresowych i wybranych chorób neurodegeneracyjnych
  • interakcje zachodzące między układem odpornościowym, a ośrodkowym układem nerwowym
  • badania nad regeneracją nerwów obwodowych
  • badania w zakresie psychoneuroimmunologii

Metody badawcze:

  • rejestracja lokalnych potencjałów polowych oraz zewnątrzkomórkowa rejestracja wyładowań pojedynczych neuronów w warunkach in vitro - skrawki mózgowe
  • badania behawioralne gryzoni w powiązaniu z jednoczesną rejestracją aktywności elektrofizjologicznej wybranych obszarów mózgu dzięki implantacji wielokanałowych elektrod przeznaczonych do chronicznych eksperymentów
  • techniki elektrofizjologiczne, w tym mikroelektrody, patch-clamp, wielokanałowa rejestracja jednostkowa, umożliwiające analizę potencjałów czynnościowych, sygnałów elektrycznych i przewodnictwa synaptycznego
  • metody histologiczne i immunohistochemiczne, pozwalające na badanie struktur tkankowych mózgu oraz identyfikację neuroprzekaźników, receptorów i białek w tkance nerwowej
  • mikroskopia świetlna, fluorescencyjna i konfokalna

Tematyka badawcza:

  • W obrębie Katedry Neurobiologii funkcjonują cztery laboratoria, w których prowadzone są badania z zakresu neurobiologii, neurofizjologii i neurochemii ośrodkowego układu nerwowego.

ZAKOŃCZENIE SPECJALNOŚCI BIOTECHNOLOGIA MOLEKULARNA

Kończąc studia na specjalności Biotechnologia molekularna możesz:

  • dalej kształcić się w ramach Szkół Doktorskich lub pracować naukowo
  • pracować zawodowo:
    • znajdując zatrudnienie w jednostkach przemysłu farmaceutycznego, chemicznego i spożywczego, w przedsiębiorstwach zajmujących się ochroną środowiska, w ośrodkach hodowli roślin lub zwierząt, a także w kontrolnych, badawczych lub badawczo-rozwojowych laboratoriach o zróżnicowanym profilu wykorzystujących metody biologii komórki, molekularne, mikrobiologiczne, biotechnologiczne, inżynierii genetycznej.

Instytut Biologii Eksperymentalnej

Opis zadań

Instytut Biologii Eksperymentalnej stanowi jednostkę organizacyjną Wydziału Biologii i Ochrony Środowiska. Głównym zadaniem Instytutu jest koordynacja kształcenia studentów w zakresie Biologii (specjalność Biologia Eksperymentalna, Genetyka, Biologia Stosowana i Molekularna) i Biotechnologii (specjalność Biotechnologia Roślinna). Instytut jako jednostka dydaktyczna skupia pięć katedr, które realizują wspólne programy dydaktyczne:

  • KATEDRA BIOTECHNOLOGII MOLEKULARNEJ I GENETYKI
  • KATEDRA CYTOFIZJOLOGII
  • KATEDRA EKOFIZJOLOGII ROŚLIN
  • KATEDRA FIZJOLOGII I BIOCHEMII ROŚLIN
  • KATEDRA NEUROBIOLOGII (jako samodzielna jednostka)

Dane kontaktowe

Instytut Biologii Eksperymentalnej

  • Banacha 12/16 90-237 Łodź
tel: 42-635-44-24 e-mail: www: https://www.biol.uni.lodz.pl

Lista jednostek